NIFE-Hannover
AG „KRYOKONSERVIERUNG UND KRYOTECHNIK FÜR DIE REGENERATIVE MEDIZIN“ (Prof. B. Glasmacher)AG „BIOINTERAKTION UND KRYOTECHNIK“ (Prof. B. Glasmacher)
NIFE-Hannover
Menü

NIFE Video

NIFE - Making-of

Unsere Partner

AG „KRYOKONSERVIERUNG UND KRYOTECHNIK FÜR DIE REGENERATIVE MEDIZIN“ (Prof. B. Glasmacher)

Kontakt:

Institutsleitung: Prof. Prof. h.c. Dr.-Ing. Birgit Glasmacher, M.Sc.
Institut für Mehrphasenprozesse, Leibniz Universität Hannover
Tel.: +49 511 762 3828, Email: sekretariat@imp.uni-hannover.de

Ansprechpartner vor Ort: Oleksandr Gryshkov, PhD
Tel.: +49 511 532 1342 / +49 511 7623822, Email: gryshkov@imp.uni-hannover.de

Keywords: Biobanking, Kryokonservierung von Zellen, Geweben und Organen, kontrolliertes Einfrieren/Auftauen, Gefriertrocknung, gerichtete Erstarrung, RAMAN-AFM, Kontrolle der Eiskristallbildung, Kryomikroskopie, Kryotechnologie, (epigenetische) Analyse kryokonservierter Proben

Forschungsschwerpunkte

Der Fokus der Forschung liegt auf der Entwicklung sicherer und effektiver Protokolle für die Kryokonservierung sowie neuer Einfrier- und Auftauapparate für Langzeitlagerung und Biobanking von Gewebe und Zellen:

  • Untersuchung optimaler Einfrier- und Auftauparameter sowie neuer xenofreier, nicht-toxischer Einfrierbedingungen mit dem Ziel hoher Zellvitalität und epigenitischer Langzeitstabilität in kryokonservierten Materialien (klinisch relevante Zellen, Gewebe und durch Tissue Engineering erzeugte Konstrukte)
  • Entwicklung und Validierung einzigartiger und anwendungsspezifischer Kryokonservierungsapparate mit programmierbaren Einfrier- und Auftauraten
  • Entwicklung von Methoden und Apparaten für das Induzieren und aktive Kontrollieren der Eisnukleation bei spezifischen Temperaturen mittels Elektrofreezing, Power-Down-Techniken und Elektroporation (in Kooperation mit University of Ljubljana, Slowenien)
  • Entwicklung von Strategien zur Visualisierung sowie Analyse der Eisbildung und Rekristallisation zur Untersuchung zell- und gewebespezifischer Kryokonservierungsparameter für effektives Biobanking (in Kooperation mit Herbrew Univeristy of Jerusalem, Israel)
  • Mikroskopbasierte Visualisierung und Analyse gefriergetrockneter Zellen und Gewebe mittels Linkam FCDS196 cryostage (in Kooperation mit KNURE, Ukraine)
  • Analyse der beim Einfrieren, Auftauen und Gefriertrocknen auftretenden biochemischen Veränderungen mittels RAMAN Mikroskopie (konfokales RAMAN Mikroskop alpha 300RA von WiTec)
  • Alginatverkapselung zum Schutz von Zellen
  • Rheologische Charakterisierung neuartiger Kryoprotektiva und ihr Einfluss auf das Zellverhalten während Vorbehandlung, Einfriervorgang, Lagerung und Auftauvorgang

CRYOPRESERVATION AND CRYOTECHNOLOGY FOR REGENERATIVE MEDICINE (AG Glasmacher)

PUBLICATIONS OF THE GROUP (2015-2019)

  1. V. Mutsenko, D. Tarusin, B. Sydykov, A. Beck, D. Dipresa, A. Lode, T.El. Khassawna, A. Petrenko, S. Korossis, W.F. Wolkers, M. Gelinsky, B. Glasmacher, O. Gryshkov. ‘In air’ cryopreservation of mesenchymal stromal cells on 3D collagen-hydroxyapatite-scaffolds. Cryobiology, submitted

  2. V. Mutsenko, A. Barlič, T. Pezić, J. Dermol-Černe3, B. Dovgan, B. Sydykov, W.F. Wolkers, I. Katkov, B. Glasmacher, D. Miklavčič, O. Gryshkov. DMSO- and serum-free cryopreservation of human umbilical cord mesenchymal stem cells using electroporation-assisted delivery of sugars. Cryobiology, submitted.

  3. V. Mutsenko, O. Gryshkov, O. Rogulska, A. Lode, A.Yu. Petrenko, M. Gelinsky, B. Glasmacher, H. Ehrlich. Chitinous Scaffolds from Marine Sponges for Tissue Engineering. In: Choi AH, Ben-Nissan B (eds) Marine-Derived Biomaterials for Tissue Engineering Applications, Springer Series in Biomaterials Science and Engineering, Springer 2019 (accepted).

  4. V.M. Mutsenko. Cryopreservation of mesenchymal stromal cells within tissue engineering approaches (2019). PhD thesis, Hannover Medical School, Hannover.

  5. M.V. Prykhodko, M.Y. Tymkovych, O.G. Avrunin, V.V. Mutsenko, O. Gryshkov, B. Glasmacher. Image processing for automated microscopic analysis of ice recrystallization process during isothermal annealing. Int J Bioelectromagnetism 2018;20(1): 72-75.

  6. V.V. Mutsenko, V.V. Bazhenov, O. Rogulska, D.N. Tarusin, K. Schütz, S. Brüggemeier et al. 3D chitinous scaffolds derived from cultivated marine demosponge Aplysina aerophoba for tissue engineering approaches based on human mesenchymal stromal cells. Int J Biol Macromol. 2017;104(B): 1966-1974.

  7. V.V. Mutsenko, O. Gryshkov, L. Lauterboeck, O. Rogulska, D.N. Tarusin, V.V. Bazhenov et al. Novel chitin scaffolds derived from marine sponge Ianthella basta for tissue engineering approaches based on human mesenchymal stromal cells: Biocompatibility and cryopreservation. Int J Biol Macromol. 2017;104(B): 1955-1965.

  8. A. Chatterjee, D. Saha, H. Niemann, O. Gryshkov, B. Glasmacher, N. Hofmann. Effects of cryopreservation on the epigenetic profile of cells. Cryobiology 2017;74: 1-7.

  9. L. Lauterboeck, W.F. Wolkers, B. Glasmacher. Cryobiological parameters of multipotent stromal cells obtained from different sources. Cryobiology 2017;74: 93-102.

  10. D. Pogozhykh, Y. Pakhomova, O. Pervushina, N. Hofmann, B. Glasmacher, G. Zhegunov. Exploring the Possibility of Cryopreservation of Feline and Canine Erythrocytes by Rapid Freezing with Penetrating and NonPenetrating Cryoprotectants. PLoS ONE 2017;12(1): e0169689, DOI: 10.1371/journal.pone.0169689.

  11. L. Lauterboeck, D. Saha, A. Chatterjee, N. Hofmann, B. Glasmacher. Xeno-free cryopreservation of bone marrow derived multipotent stromal cells from Callithrix jacchus. Biopreserv Biobank. 2016;4(6): 530-538.

  12. A. Chatterjee, D. Saha, B. Glasmacher, N. Hofmann. Chilling without regrets: Deciphering the effects of cryopreservation on the epigenetic properties of frozen cells will benefit the applications of cryotechnology. EMBO Reports 2016;17: 292-295.

  13. A. Chatterjee. Effects of cryopreservation on histone posttranslational modifications of stem cells (2016). PhD Thesis, Hannover Medical School, Hannover.

  14. D. Saha. Effect of cryopreservation procedures on the viability, genetic and epigenetic stability of multipotent stromal cells (2016). PhD thesis, Hannover Medical School, Hannover.

  15. L. Lauterböck. Cryopreservation of stem cells using induced nucleation (2016). PhD thesis Hannover Medical School, Hannover.

  16. A. Repanas, L. Lauterboeck, D. Marvilas, B. Glasmacher. Polycaprolactone and polycaprolactone/ chitosan electrospun scaffolds for tissue engineering applications. Sch J App Med Sci. 2016:4(1C): 228-232.

  17. O. Gryshkov. High voltage encapsulation of multipotent stromal cells in alginate (2015). PhD thesis, Hannover Medical School, Hannover.

  18. O. Gryshkov, N. Hofmann, L. Lauterboeck, D. Pogozhykh, T. Mueller, B. Glasmacher. Multipotent Stromal Cells Derived from Common Marmoset Callithrix Jacchus within Alginate 3D Environment: Effect of Cryopreservation Procedures. Cryobiology 2015:71(1): 103-111.

  19. L. Lauterboeck, N. Hofmann, T. Mueller, B. Glasmacher. Active control of the nucleation temperature enhances freezing survival of multipotent mesenchymal stromal cells. Cryobiology 2015;17(3): 384-390.

  20. N. Hofmann, H. Sun, A. Chatterjee, D. Saha, B. Glasmacher. Thermal Pretreatment Improves Viability of Cryopreserved Human Endothelial Cells. Biopreserv Biobank. 2015;13: 348-355.

  21. O. Gryshkov, D. Pogozhykh, N. Hofmann, O. Pogozhykh, T. Mueller, B. Glasmacher. Encapsulating Non-Human Primate Multipotent Stromal Cells in Alginate via High Voltage for Cell-Based Therapies and Cryopreservation. PLoS One 2014;9(9): e107911.

  22. O. Gryshkov, D. Pogozhykh, N. Hofmann, N. Hofmann, T. Mueller, B. Glasmacher. Process engineering of high voltage alginate encapsulation of mesenchymal stem cells. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2014;36: 77-83.